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UNIVERSIDADE ESTADUAL DE CAMPINAS FACULD ADE DE ENGENHARIA DE ALIMENTOS TA615 – Microbiologia de Alimentos AULA PRÁTICA N°11 – ANÁLISE DE ÁGUA O exame microbiológico da água tem como objetivo principal, verificar sua potabilidade. Para a análise microbiológica, as amostras de água devem ser coletadas do ponto representativo do sistema de distribuição ou do reservatório a ser examinado. As amostras devem ser acondicionadas em frascos de vidro de 300 a 500 mL, previamente limpos e esterilizados. A lavagem dos frascos deve ser efetuada com bastante rigor, cuidando para que haja total remoção dos resíduos de produtos de limpeza, que poderiam atuar como agentes bactericidas, podendo levar a um resultado falso negativo. Portanto, enxaguar os frascos em água corrente limpa, repetindo o procedimento de 6 a 12 vezes. A esterilização dos frascos deve ser em autoclave a 121°C durante 15 min., e com alguma reserva ferver por 30 minutos na água em ebulição. Para água clorada adicionar 0,1mL de uma solução 10% de tiossulfato de sódio (Na2S2O3) nos frascos de coleta antes da esterilização, para cada 100mL de amostra que se pretende coletar, a fim de se obter uma concentração final de 100 mg/mL, para remoção do cloro residual. Para amostra de água com até 5mg/L de cloro residual, adicionar 0,1 ml de solução de tiossulfato de sódio a 3% para cada 100mL d e amostra. Para a coleta das amostras da água do sistema de distribuição (torneira), limpar a área externa com álcool 70% e flambar (se o material for resistente ao calor); deixar a água fluir por 2 -3 minutos antes da retirada da amostra. Nos rios, lagos, reservatórios e fontes não coletar as amostras nos locais de água estagnada ou próxima das margens. Evitar a entrada de materiais flutuantes no recipiente, durante a coleta. O frasco de vidro deve permanecer fechado e a tampa será retirada apenas o tempo suficiente para a coleta da amostra. Não encher o recipiente (deixar 1/3 do volume livre), para não dificultar a homogeneização da amostra para análise. Coletar 300mL de água, volume suficiente para a análise microbiológica completa. As amostras devem ser transportadas e armazenadas a temperatura de 4-10C, devendo ser analisadas dentro de 6h, e no máximo 24h, após a coleta. 1. COLETA DE ÁGUA DO SISTEMA DE DISTRIBUIÇÃO (TORNEIRA) (Demonstrativo) Material: - 1 frasco de 500mL estéril contendo 0,3mL de solução de tiossulfato de sódio a 3%; - Algodão embebido com álcool 70% Procedimento: - Escolher o ponto de coleta do sistema de distribuição (torneira); - Limpar a área externa da torneira com álcool 70%; - Deixar a água fluir por 2-3 minutos antes da retirada da amostra; - Coletar aproximadamente 300mL de amostra de água. 2. ANÁLISE DE COLIFORME S TOTAIS E TERMOTOLERANTES 2.1 NMP - ANÁLISE PRESUNTIVA Material: - Uma amostra de água; - Série de 10 tubos com 10mL de caldo LST (concentração dupla), contendo tubos de Durhan invertidos; - 1 pipeta de 10mL estéril. Procedimento: - Homogeneizar a amostra; - Inocular 10mL da amostra em cada tubo de caldo LST; - Incubar a 37°C por 24-48h; - Ler os tubos. Tubos positivos: gás retido no tubo de Durhan. 2. 2. ANÁLISE CONFIRMATIVA - COLIFORMES TOTAIS E COLIFORMES TERMOTOLERANTES (Aula Seguinte) Material: - Tubos com 5mL de meio VB contendo tubos de Durhan invertidos (o n° de tubos vai depender do n° de tubos positivos da análise presuntiva). - Tubos com 5ml de caldo EC contendo tubos de Durhan invertidos (o n° de tubos vai depender do n° de tubos positivos da análise presuntiva). - 1 alça de inoculação. Procedimento: - Transferir uma alçada de todos os tubos positivos da análise presuntiva para os tubos de meio VB e tubos de meio EC. Incubar em Banho-Maria a temperatura de 44,5°C durante 24 – 48h os tubos de EC e os de VB, na estufa a 37ºC por 48h. - Ler os tubos. Tubos positivos: gás retido no tubo de Durhan. Os tubos positivos em meio VB são confirmativos para coliformes totais. Os positivos no meio EC, confirmativos para coliformes termotolerantes. - O resultado é dado pela leitura na tabela do NMP para 10 tubos (NMP água). 3. CONTAGEM DE MICRO-ORGANISMOS HETEROTRÓFICOS Material - Uma pipeta de 1mL. - 2 placas de Petri estéril. - Agar PCA fundido. Procedimento: - Inocular 1mL da amostra de água coletada em uma p laca de Petri e na outra placa inocular 0,1mL. Em seguida, adicionar 15-20mL de meio PCA fundido e à 50C. Homogeneizar e esperar solidificar. - Incubar a 37ºC de 24-48h. - Realizar a contagem das colônias e expressar os resultados em UFC/ml.