Relatório Prática_Bioquímica Humana (1)

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RELATÓRIO DE AULAS PRÁTICAS 
ENSINO DIGITAL 
	
RELATÓRIO 
01 e 02
	
	
	DATA:
_06_____/__01____/23______
RELATÓRIO DE PRÁTICA BIOQUIMICA HUMANA 
DANIELSON CARLOS SANTOS MESSIAS, 01577948
RELATÓRIO DE AULAS PRÁTICAS: Bioquímica Humana
DADOS DO(A) ALUNO(A):
	NOME:DANIELSON CARLOS SANTOS MESSIAS
	MATRÍCULA:01577948
	CURSO:FARMACIA
	POLO:ARAPIRACA
	PROFESSOR(A) ORIENTADOR(A): Maria das Gracas Freitas Bezerra
	ORIENTAÇÕES GERAIS: 
· O relatório deve ser elaborado individualmente e deve ser escrito de forma clara e
concisa;
· O relatório deve conter apenas 01 (uma) lauda por tema;
· Fonte: Arial ou Times New Roman (Normal e Justificado);
· Tamanho: 12;
Margens: Superior 3 cm; Inferior: 2 cm; Esquerda: 3 cm; Direita: 2 cm;
· Espaçamento entre linhas: simples;
· Título: Arial ou Times New Roman (Negrito e Centralizado). 
Atenção: desenvolva as respostas de maneira resumida, mas garanta que todo o conteúdo necessário foi abordado. Para essa atividade é obrigatório a indicação de referência bibliográfica. 
RELATÓRIO:
	ATIVIDADE CATALITICA DA AMILASE SALIVAR
1. Descreva os procedimentos realizado durante a aula, explicando as etapas e quais materiais utilizados.
A Amilase é uma enzima que é produzida na saliva, nas glândulas salivares dentro da cavidade oral. Serve para deteriorar um carboidrato (amido).
O amido é polissacarídeos conhecido como reserva das plantas. A ptialina como é
conhecida tecnicamente (amilase salivar) é produzida nas glândulas salivares e inicia o processo de deterioração dos carboidratos. Identificação catalítica do amido realização da técnica enzimática e química.Hidrolise química e hidrolise enzimática. A hidrolise enzimática será realizada a partir da utilização da amilase salivar. A hidrolise química será realizada a partir da utilização de ácido clorídrico. Os ácidos têm a capacidade de degradar as ligações glicosídicas que formam o amido e fazer a quebra que é realizada pela amilase salivar. As enzimas são proteínas, e elas tem uma característica de se desnaturarem de acordo com o meio em que elas são submetidas. Calor, temperatura, reação catalítica, substrato, todos são componentes que podem alterar essa reação catalítica. Nesse processo iremos utilizar o banho gelo e banho mar ia a fim de verificar se essas alterações de temperatura também influenciam na reação catalítica em ambos os métodos.
Matérias utilizados:
Amilase salivar.
Ácido clorídrico HCHC.
Amido 1%
Lugol 2%
3 tubos para realização da atividade química (AA1, AA2, AA3)
3 tubos para realização da atividade enzimática (AA1, AA2, AA3)
Banho de gelo
Banho maria
Proveta Becker
Pera de borracha
Pipeta
2. Responda as Perguntas:
a) Qual a composição bioquímica do amido?
 O amido é formado por uma cadeia composta por dois polissacarídeos, amilase e
amilopectina.
Amilose;
Homo polissacarídeo (Glc);
Linear α – (1-4)
- Amilopectina;
Homo polissacarídeo (Glc);
Ramificado α – (1-4) α – (1-6)
b) Qual o objetivo do uso de HCl, aquecimento e resfriamento no procedimento da hidrólise química do amido?
O objetivo dessa técnica é obter o maior número de cadeias lineares, para facilitar o pareamento, aumentando o teor do amido após a gelatização e resfriamento. Após adicionar as 5 gotas de lugol percebemos que teve modificação. Está esverdeado. Não houve a hidrolise, tem a presença de amido no tubo. Após o banho de gelo ainda há presença de amido. Não houve hidrolise em ambos os tubos enzimático e químico. A cor vai clareando com o tempo. Após adicionar as 5 gotas de lugol percebemos que ficou uma cor azul escura. Percebemos o lugol interagindo com o amido. Após adicionar as 5 gotas de lugol percebemos que ficou uma cor azul escura. Percebemos o lugol interagindo com o amido.
c) Descreva a sequência de transformações operadas pela amilase na molécula da amilose.
Com a mastigação é liberada a amilase, presente na saliva, ela catalisará a hidrolise na ligação glicosídicas da amilose, resultando em maltose, glicose e amilopectina.
d) Explique os resultados obtidos durante o ensaio bioquímico.
A solução de lugol 2% (concentração – solução de iodo que reage com a composição do amido formando uma cor esverdeada , escura, azulada quando encontra o amido). O tempo de incubação e temperatura influenciam na hidrolise.
	REAÇÃO DE SELIWANOFF (REAÇÃO PARA DISTINÇÃO ENTRE ALDOSES E CETOSES)
1. Descreva os procedimentos realizado durante a aula, explicando as etapas e quais materiais utilizados.
É um teste químico, com objetivo é distinguir aldose da cetose, depois de condensada
com Resorcinol havendo uma desidratação com uma coloração a vermelhada.
Material utilizado:
Solução de HCL.
0,1 Glicose 1%.
Frutose 1%
Reativo de Seliwanoff
1 tubo de frutose
1 tubo de glicose
1 tubo de água (serve de controle negativo ).
Banho maria temperatura em torno de 70 graus.
Becker.
Pera de borracha.
Pipeta.
2. Responda as Perguntas:
a) Qual o princípio da técnica de Seliwanoff? 
O teste é baseado na reação da mistura do HCL com os carboidratos, que quando misturados, causa a desidratação dos carboidratos devido à hidrólise da ligação glicosídica.
b) Qual o objetivo de utiliza um tubo apenas com água destilada.
A água destilada serve para atuar como controle. Serve de controle negativo.
c) Porque é necessário aplicar fervura e ácido clorídrico (HCl) durante o teste de Seliwanoff?
Aldoses e cetoses são grupos que são identificados dentro dos carboidratos. Aldoses são grupos de carboidratos simples. Cetoses são monossacarídeos que contem grupo cetona. Essa reação é chamada de Seliwanoff. Onde utiliza o reativo Seliwanoff. Essa reação se dá porque as cetoses reagem com ácidos fortes. Iremos utilizar o ácido clorídrico. E ao reagir com esses ácidos fortes esse composto produz furfurol. O furfurol reage com o resorcinol. O resorcinol é um composto derivado da ureia que está presente no reativo de Seliwanoff.
d) Explique os resultados obtidos durante o ensaio bioquímico quanto a presença de aldose e cetoses.
Confirmamos que a frutose é um cetose. Na reação ocorre a produção do furfural e tem reação com o resorcinol dentro do reativo de Seliwanoff e conseguimos perceber pela coloração vermelha intensa do tubo de frutose.
	PRECIPITAÇÃO POR ÁCIDOS FORTES E METAIS PESADOS
1. Descreva os procedimentos realizado durante a aula, explicando as etapas e quais materiais utilizados.
Proteínas são biomoléculas muito importantes e estruturais, tem função catalíticas, entre outros. Vamos fazer uma técnica que vai identificar que essas proteínas por terem compostos carbanimicos, aquelas estruturas químicas. Elas podem reagir e podem precipitar com algumas substâncias. Entre elas a principal fonte de precipitação de proteínas são ácidos fortes no caso vamos utilizar o ácido tricloroacético 20% mas poderia ser utilizado também o ácido sulfúrico entre outros. Podemos também utilizar substâncias como metais pesados como cobre, chumbo, mercúrio, para fazer essa precipitação, usamos o acetato de chumbo de 10% para realizar a precipitação. E com a matéria prima a ovoalbumina 10%. A precipitação é imediata
 Material utilizados:
Ácido tricloroacético 20%
Acetato de chumbo 10%
Ovoalbumina 10%
Pera de borracha
Pipeta
Becker
2. Responda as Perguntas:
a) Por que a ovoalbunina precipita na presença de ácidos fortes e metais pesados?
Com essa prática é possível perceber que além modificação do ponto elétrico, do meio de cargas iônicas, de tudo isso a gente tem nas proteínas um ponto que é importante para a precipitação são alguns tipos de elementos químicos que conseguem clivar, quebrar as estruturas de proteínas fazendo esse processo de precipitação que a gente também pode fazer com o ácido e com o metal pesado.
b) Explique por que a ovoalbumina torna-se insolúvel após a precipitação.
Com essa prática é possível perceber que além modificação do ponto elétrico, do meio de cargas iônicas, de tudo isso que a gente tem nas proteínas um ponto que é importante para a precipitação são alguns tiposde elementos químicos que conseguem clivar, quebrar as estruturas das proteínas fazendo esse processo de precipitação que a gente também pode fazer com o ácido e com o metal pesado. Os cátions de metais pesados como Hg2+, Pb2+, Cu2+, Fe2+, Cd2+ e Zn2+ formam precipitados insolúveis de proteínas, denominados de acordo com o elemento formado (exemplo: proteinato de mercúrio, proteinato de chumbo, etc). Essa precipitação é mais intensa quando o pH está acima do ponto isoelétrico (pl). Isso porque, acima do pl, a carga líquida sobre a proteína é negativa (ver determinação do ponto isoelétrico da caseína), favorecendo a interação com os cátions provenientes do sal.
c) Explique os resultados encontrados no experimento.
Verificamos que também teve uma precipitação. Porém conseguimos ter mais visibilidade e perceber que no tubo do ácido teve uma precipitação mais intensa, pois o ácido forte tem a capacidade de quebrar as ligações peptídicas da proteína mais do que o chumbo. Temos um material mais leitoso no ácido do que no metal pesado. De toda forma também temos essa percepção em relação a solução inicial e as soluções precipitadas. Com essa prática é possível perceber que além modificação do ponto elétrico, do meio de cargas iônicas, de tudo isso que a gente tem nas proteínas um ponto que é importante para a precipitação são alguns tipos de elementos químicos que conseguem clivar, quebrar as estruturas da proteína fazendo esse processo de precipitação que a gente também pode fazer com o ácido e com o metal pesado.
	PRECIPITAÇÃO FRACIONADA POR SOLUÇÕES SALINAS CONCENTRADAS
1. Descreva os procedimentos realizado durante a aula, explicando as etapas e quais materiais utilizados.
A proteína é uma biomolécula muito importante. As proteínas são classificadas de
acordo com o seu ponto isoelétrico e dependendo do ambiente onde ela está colocada
ela interage de forma iônica com alguns compostos e podemos mudar essa
concentração iônica de acordo com o adicionamento de sais. Esse adicionamento de
sais a gente consegue fazer com que mude a concentração desse ambiente onde está a
proteína e consiga dissociar as proteínas de forma a precipitá-las. Esse é o intuito da
prática. Que consigamos em uma concentração onde temos vários tipos de proteínas
fazer uma separação. Ela é muito utilizada em colunas de sílica, de resinas para
separação de proteínas.
Tubo A
Solução de ovoalbumina e concentração salina
2 ml de solução de ovoalbumina
2 ml concentração de salina.
Observar, pois, a reação é imediata.
Assim que adicionada percebemos a formação de um composto leitoso, esbranquiçado
que indica precipitação das proteínas.
Tubo B
Solução de ovoalbumina e concentração de sulfato de amônio e água
2 ml de solução de ovoalbumina.
Adicionar água (não fala quantidade)
Adicionar sulfato de amônio (não fala quantidade).
Observar, pois, a reação é imediata.
Não conseguimos perceber a formação desse precipitado. A água diminui, interfere na
questão iônica das cargas.
Essa prática demonstra a importância do ponto isoelétrico das proteínas bem como o
ambiente se é um meio dependendo da carga iônica a qual a proteína é submetida ela
pode sim ser separada através de uma concentração salina que irá proporcionar essa
separação das proteínas que pode ser através de uma coluna de resina, dependendo da
coluna de onde for utilizada. É de importante utilização clínica e biológica para demais
funções de onde queira isolar determinada proteínas em um pul de determinadas
proteínas.
Material utilizados:
Reagentes
Ovoalbumina 10%
Sulfato de amônio concentração (solução concentrada de sais, salina, que vai
proporcionar a precipitação das proteínas)
Água (para padrão negativo)
Pera de borracha
Pipeta
Becker
2. Responda as Perguntas:
a) Explique os conceitos de “Salting out”, “Salting in” e camada de solvatação?
Quando adicionamos sais neutros a uma solução, ocorre um aumento da força iônica (aumento da concentração de íons) do sistema. Assim, quando adicionamos pequenas quantidades de sal a uma solução contendo proteínas, as cargas provenientes da dissociação do sal passam a interagir com as moléculas proteicas, diminuindo a interação entre elas. Consequentemente, temos um aumento da solubilidade da proteína no meio aquoso. A esse fenômeno dá -se o nome de “Salting-in”. Em condições de elevada força iônica, decorrente da adição de grandes quantidades de sal, temos o efeito contrário. A água, que apresenta um grande poder de solvatação, passa a interagir com as duas espécies: as proteínas e os íons provenientes da dissociação do sal. Porém, a água apresenta maior tendência de solvatação de partículas menores (nesse caso, os íons). As moléculas de água, ocupadas em sua interação com os íons, deixam a estrutura proteica. Como consequência, temos maior interação proteína proteína, diminuição da solubilidade em meio aquoso e, consequentemente, precipitação da proteína. A esse fenômeno de insolubilização da proteína em decorrência de um considerável aumento da força iônica do meio dá -se o nome de “Salting-out”. Este é um processo importante para separação de proteínas uma vez que a concentração de sal necessária para precipitação é diferente para cada proteína
b) Qual o princípio bioquímico do experimento?
As proteínas são classificadas de acordo com o seu ponto isoelétrico e dependendo do ambiente onde ela está colocada ela interage de forma iônica com alguns compostos e podemos mudar essa concentração iônica de acordo com o adicionamento de sais. Esse adicionamento de sais a gente consegue fazer com que mude a concentração desse ambiente onde está a proteína e consiga dissociar as proteínas de forma a precipitá-las. Esse é o intuito da prática. Que consigamos em uma concentração onde temos vários tipos de proteínas fazer uma separação. Ela é muito utilizada em colunas de sílica, de resinas para separação de proteína
c) Explique os resultados encontrados durante o experimento.
Não conseguimos perceber a formação desse precipitado no tubo B com sulfato de amônio. A água diminui, interfere na questão iônica das cargas. A água, que apresenta um grande poder de solvatação, passa a interagir com as duas espécies: as proteínas e os íons provenientes da dissociação do sal. Porém, as moléculas de água apresentam maior tendência de solvatação de partículas menores (nesse caso, os íons). As moléculas de água, ocupadas em sua interação com os íons, “abandonam” a estrutura proteica. Como consequência, temos: maior interação proteína -proteína, diminuição da solubilidade em meio aquoso e, consequentemente, precipitação da proteína. A esse fenômeno de insolubilização da proteína em decorrência de um considerável aumento da força iônica do meio dá-se o nome de “Salting-out”. Já no tubo A percebemos a precipitação e formação de liquido leitoso esbranquiçado.
	REAÇÃO DE BENEDICT (IDENTIFICAÇÃO DE AÇÚCARES REDUTORES)
1. Descreva os procedimentos realizado durante a aula, explicando as etapas e quais materiais utilizados.
Os açúcares redutores são alguns carboidratos que apresentam estrutura que é uma
hidroxila em um dos carbonos que é o c1. E essa hidroxila ela consegue reagir com
diversos íons principalmente metálicos. E a reação se baseia nessa ligação onde a
carbonila vai se ligar a um reativo que é chamado reativo de Benedict. Esse reativo
contem íons cúpricos que ao reagir com essa carbonila ela forma um composto
chamado de oxidocuproso. O reagente tem uma cor azul bem intensa e pronunciada. A
reação positiva dessa junção entre a carbonila do açúcar redutor com o íon cuproso
desse reativo formam um composto vermelho tijolo que é uma coloração bem
diferenciada desse reativo. A partir dessa reação conseguimos identificar quais são os
principais açúcares redutores. A reação não ocorre após imediata colocação do
material. E necessária uma reação a quente onde vamos utilizar o banho maria para
realização reação. Tubo de glicose.
Adicionar 5 ml de reativo de Benedict.
Adicionar 5 ml de glicose.
Não teve reação. É necessário levar ao banho maria para percebera reação de
positividade ou não.
Mesmo após o banho maria por 5 minutos em temperatura a 70 graus houve uma
modificação, porém não é uma reação de uma cor vermelho tijolo, mas essa
modificação para a cor esverdeada indica que houve de fato uma redução dos íons.
Houve uma reação do cobre. E nesse caso não a formação do ácido cuproso, já foi
reduzido ao máximo o cobre, mas conseguimos perceber uma diferença entre a
sacarose e a glicose. Isso significa que a glicose geralmente a aldose é um a gente
redutor (monossacarídeo) e a frutose e a sacarose não é redutora. Identificando esses
principais açúcares redutores como a glicose que é nosso monômero e a sacarose.
Essa prática é importante afim de várias outras reações que ocorrem em relação aos
carboidratos redutor es que são utilizados em diversas reações na indústria e outros
segmentos.
Tubo da sacarose;
Adicionar 5 ml do reativo de Benedict;
Adicionar 5 ml de sacarose;
Homogenizar;
Não teve reação.
É necessário levar ao banho maria para perceber a reação de positividade ou não.
Mesmo após o banho maria por 5 minutos em temperatura a 70 graus não houve
reação. A cor que está no tubo é do reativo de Benedict (azul). Não houve mudança de
cor.
Materiais utilizados:
 Reagentes:
Glicose 1% (principal monossacarídeo vamos tentar visualizar se ele é um açúcar
redutor)
Solução de sacarose 1% ( dissacarídeo)
Reativo de Benedict Água (controle negativo)
Pera de borracha.
Pipeta.
Becker.
Banho maria (temperatura 70 graus por 5 minutos)
2. Responda as Perguntas:
a) Explique o princípio da técnica bioquímica do experimento.
As principias biomoléculas são os carboidratos, lipídios, aminoácidos, proteínas,
nucleotídios e ácidos nucleicos. Estas juntamente com outras moléculas regulatorias
como vitaminas e minerais atuam nos mecanismos de geração de energia, sintese e
divisão celular.
b) Qual o conceito de “açúcares redutores”?
Os açúcares redutores são carboidratos monossacarídeos, capazes reduzir os sais de
cobre, prata e bromo em soluções alcalinas, pois possuem grupos aldeídos ou cetonas
livres.
c) Explique os resultados encontrados no experimento.
Tubo de glicose, mesmo após o banho maria por 5 minutos em temperatura a 70 graus houve uma modificação, porém não é uma reação de uma cor vermelho tijolo, mas essa modificação para a cor esverdeada indica que houve de fato uma redução dos íons. Houve uma reação do cobre. E nesse caso não a formação do ácido cuproso, já foi reduzido ao máximo o cobre, mas conseguimos perceber uma diferença entre a sacarose e a glicose. Isso significa que a glicose geralmente a aldose é um agente redutor(monossacarídeo) e a frutose e a sacarose não é redutora.
Tubo da sacarose.Mesmo após o banho maria por 5 minutos em temperatura a 70 graus não houve redução e nem reação entre os íons. Significa q eu a sacarose não é um carboidrato redutor, ou seja, ele não tem a hidroxila. A carbonila que faz a reação com os íons cúpricos. Tubo da água. Mesmo após o banho maria por 5 minutos em temperatura a 70 graus não houve reação. A cor que está no tubo é do reativo de Benedict (azul). Não houve mudança de cor.
d) Explique como o experimento pode ser aplicado nas atividades na área clínica.
Reagente de Benedict é usado geralmente no lugar da solução de Fehling para
detectar excesso de açúcar na urina e detectar uma possível diabete. O teste pode ser
feito num tubo de ensaio, adicionando 10 ml do reagente de Benedict em 100 ml da
primeira urina.
	REAÇÃO DE BIURETO
1. Descreva os procedimentos realizado durante a aula, explicando as etapas e quais materiais utilizados.
Os materiais utilizados foram: reativo de biureto, ovoalbumina 10% que é a proteína do
ovo, pera de borracha, 1 ml de água destilada e 2 tubos. Para iniciar foi adicionado 1 ml
de água destilada em um tubo juntamente com o reativo de biureto e no outro tubo foi
adicionado a ovoalbumina logo em seguida colocado o reativo de biureto.
Posteriormente foi percebido que no tubo onde havia a ovoalbulina e o reativo de biureto
ocorreu a mudança de cor indicando a presença da proteína, enquanto no tubo onde
havia a água não houve a reação.
2. Responda as Perguntas:
a) Explique o princípio bioquímico da Reação de Biureto.
Esse reativo serve para a identificação de proteínas.
b) Qual o tipo de ligação que ocorre entre o Biureto e as moléculas identificadas?
Ocorre a ligação peptídica.
c) Explique os resultados encontrados no experimento. 
Como dito anteriormente, no tubo onde havia a ovoalbumina juntamente com o reativo de biureto ocorreu a mudança de cor indicando a presença de proteína, enquanto no tubo onde havia sido adicionado a água não houve reação.
	REAÇÃO DO LUGOL (IDENTIFICAÇÃO DE POLISSACARÍDEOS)
1. Descreva os procedimentos realizado durante a aula, explicando as etapas e quais materiais utilizados.
2. Responda as Perguntas:
a) Explique o princípio bioquímico da utilização do lugol na identificação de polissacarídeos.
Quanto mais escura e intensa for a cor significa que há maior quantidade de polissacarídeo.
b) Explique para quais situações essa técnica pode ser utilizada. 
Utilizada para a verificação do amido
c) Explique os resultados encontrados no experimento.
Foi observado que no tubo onde havia sido colocado a água ficou amarelada meio amarronzado e no outro tubo onde havia o amido ficou com uma cor esverdeada e isso indica a presença de amido
	REAÇÃO DE SAPONIFICAÇÃO
1. Descreva os procedimentos realizado durante a aula, explicando as etapas e quais materiais utilizados.
Os triglicerídeos são um dos tipos de classificação dos lipídeos, são nossa reserva energética. Os triglicerídeos são importantes também na indústria, na produção de sabão, essa reação ela ocorre porque, um sal, é realizado através de uma hidrólise, onde a hidrólise alcalina, utilizando um sal alcalino, faz a quebra do triglicerídeo em glicerina e ácido graxo. Foram usados 2 Pera de borracha, 2 pepitade 1 ml, 2 tubos de ensaio, banho maria, Becker, solução de amido 1%, solução de lugol 2%, e água destilada.
2. Responda as Perguntas:
a) Explique bioquimicamente o que são ácidos graxos e triglicerídeos.
Os triacilgliceróis são uma forma de armazenamento de energia nos organismos muito mais eficiente, por serem menos oxidados que os carboidratos e por exigirem pouca água de solvatação quando armazenados porque são apolares
b) Explique a fundamentação teórica da técnica de saponificação.
 É a reação que cria um sal orgânico e um álcool por meio de um éster de base inorgânica em uma solução aquosa.
c) Explique os resultados encontrados no experimento.
 A reação de saponificação também é muito conhecida como hidrólise alcalina e é através dela que se dá o processo de manufaturação do sabão. Em termos químicos, seria a mistura de um éster proveniente de um ácido graxo e uma base hidróxido de sódio para se obter sabão sal orgânico.
	SOLUBILIDADE DOS LIPÍDIOS
1. Descreva os procedimentos realizado durante a aula, explicando as etapas e quais materiais utilizados.
Os lipídios são uma biomolécula muito importante. Temos várias categorias como os ácidos graxos, triglicerídeos, fosfolipídios, todos eles fazendo parte de alguma função do nosso corpo. Essa biomolécula tem uma característica iguais onde tem uma hidrofobia, não é solúvel em água, consegue perceber visualmente, quando há uma separação entre o óleo e a água, foram usados óleo de milho, água destilada, solução de ácido clorídrico, solução de hidróxido de sódio, solvente de éter etílico, álcool etílico.
2. Responda as Perguntas:
a) Explique a estrutura bioquímica dos lipídios correlacionado com sua característica de insolubilidade em soluções aquosas.
Entre as principais funções biológicas dos lípidos está o armazenamento de energia, o facto de se tratar de moléculas estruturais nas membranas e de intervir na sinalização celular.
 
b) Explique a fundamentação teórica da técnica de solubilidade dos lipídios. 
Os lipídios apresentam baixa solubilidade em água é boa solubilidade em solventes orgânicos. Sabendoque os lipídios são moléculas apolares e conhecendo o princípio da solubilidade que "semelhante dissolve semelhante”, certamente as amostras que contêm lipídios formarão soluções de apenas uma fase com as substâncias apolares; e com as substâncias polares formam soluções onde são observadas mais de uma fase.
c) Explique os resultados encontrados no experimento. 
No tubo de etanol consegue-se perceber a visualização de algumas bolhas por menoridade da molécula do lipídio. O álcool etílico, não é tão solúvel, mas consegue fazer um pouco dessa solubilidade. No tubo de éter visualiza-se que com o éter é onde se consegue uma melhor solubilidade. O éter é o único solvente que consegue fazer essa solubilidade. No restante dos tubos não houve solubilidade.
Referencias de pesquisa:
https://pt.wikipedia.org/wiki/Amido
Acessado em 01 de JANEIRO de 2024 as 23:00
https://www.fciencias.com/2016/10/20/
teste-seliwanoff-laboratorio-online/ Acessado em 3 de JANEIRO de 2024 as 21:40
http://plone.ufpb.br/ldb/contents/paginas/
precipitacao-de-proteinas-por-adicao-de-s ais-neutros-ef eito-da-forca-ionica
Acessado e
3 de JANEIRO de 2024 as 22:00
https://www.fcfar.unesp.br/alim
entos/bioquimica/praticas_proteinas/precipitacao_proteinas.htm Acessado em 02 de
JANEIRO de 2024 a s 23:01
https://www.portalsaofrancisco.com.br/quimica/
reagente -de-benedict Acessado em 02 de JANEIRO 2024 as 23:42
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